Исследование аэробного микробного фона и антибиотикочувствительности выделенных штаммов в оториноларингологическом отделении

Т.С. ПОЛЯКОВА, В.М. КОРШУНОВ, А.В. ГУРОВ, А.С. ГЛАДКИХ

Кафедра оториноларингологии (зав. - член-корр. РАМН, засл. деятель науки РФ проф. В.Т. Пальчун) лечебного факультета РГМУ; кафедра микробиологии, вирусологии и инфекционной иммунологии (зав. - проф. В.М. Коршунов) РГМУ

В начало...

(Окончание)

Результаты наших исследований показали, что 54,5% всех выделенных штаммов микроорганизмов явились госпитальными. Это подтверждается выявленным в процессе работы широким спектром устойчивости полученных бактерий к антибиотикам, в том числе и к наиболее часто применяемым в ЛОР-практике пенициллинам и цефалоспоринам (табл. 2).

Таблица 2. Спектр антибиотикорезистентности полученных госпитальных штаммов бактерий
Антибиотик	% антибиотикорезистентных штаммов
	Стафилококки			Стрептококки			Acinetobacter
	S.aureus	S.epidermidis	Прочие	E.faecium	E.faecalis	Прочие	spp.
Бензилпенициллин	81,8	100,0	100,0	-	-	100,0	-
Оксациллин	45,5	50,0	50,0	-	-	100,0	-
Ампициллин	54,5	75,0	66,7	50,0	33,3	100,0	-
Kарбенициллин	27,2	25,0	50,0	60,0	33,3	66,7	25,0
Тетрациклин	63,6	25,0	33,3	-	-	66,7	-
Доксициклин	63,6	25,0	33,3	-	-	33,3	-
Цефалексин	27,2	50,0	33,3	-	-	33,3	75,0
Цефамандол	18,2	25,0	16,7	-	-	66,7	75,0
Цефоперазон	18,2	25,0	33,3	-	-	0	50,0
Цефтриаксон	18,2	25,0	33,3	-	-	33,3	25,0
Эритромицин	36,4	25,0	66,7	100,0	66,7	66,7	-
Kларитромицин	27,3	25,0	50,0	70,0	66,7	66,7	-
Kлиндамицин	45,5	75,0	83,3	-	-	100,0	-
Фузидин	18,2	0	16,7	40,0	33,3	66,7	-
Ципрофлоксацин	18,2	25,0	33,3	40,0	0	33,3	25,0
Офлоксацин	18,2	25,0	0	10,0	0	33,3	0
Гентамицин	27,3	25,0	33,3	50,0	33,3	-	50,0
Kанамицин	36,4	25,0	50,0	100,0	33,3	-	75,0
Амикацин	18,2	25,0	0	80,0	0	-	50,0
Тобрамицин	27,3	25,0	50	80,0	0	-	100,0
Примечание. Прочерк - антибиотик не используется для лечения инфекций, вызванных данным возбудителем (согласно рекомендациям Государственного научного центра по антибиотикам).

Среди выделенных госпитальных стафилококков к бензилпенициллину оказались резистентными 81,8% полученных штаммов S.aureus и 100% S.epidermidis, к оксациллину - 45,5 и 50% соответственно. К тетрациклинам устойчивы 64% S.aureus и 25% S.epidermidis. Резистентность к цефалоспоринам I поколения составила у этих штаммов 27 и 50% соответственно; II и III поколения - 18 и 25%; устойчивость к макролидам: 25% S.epidermidis и 36,4% S.aureus - к эритромицину, 27,3 - к кларитромицину. Фузидин ингибировал рост S.epidermidis в 100% случаев, 18% штаммов S.aureus оказались к нему нечувствительными. Резистентность к фторхинолонам составила 18% среди выделенных штаммов S.aureus и 25% - S.epidermidis.

Исследование спектра антибиотикочувствительности госпитальных штаммов энтерококков показало, что они обладают высокой устойчивостью к пенициллинам, макролидам и аминогликозидам. Выявлена 100% резистентность E.faecium к эритромицину и канамицину, 80% полученных штаммов этого вида не чувствительны к амикацину и тобрамицину, 50% - к ампициллину и гентамицину. Устойчивость E.faecalis к тестируемым пенициллинам (ампициллин и карбенициллин), гентамицину и канамицину составила 33%, к макролидам - 67%. Фторхинолоны, амикацин и тобрамицин подавляли рост выделенных штаммов E.faecalis в 100% случаев.

Среди полученных нами штаммов грамотрицательных микроорганизмов госпитальными оказались E.coli, K.ozaennae, микробы родов Acinetobacter и Pseudomonas.

Обращает на себя внимание широкий спектр резистентности к антимикробным препаратам ацинетобактеров: 75% штаммов этих бактерий оказались нечувствительными к цефалексину и цефамандолу, 50% - к цефаперазону, 25% - к цефтриаксону. Устойчивость к аминогликозидам среди этих микроорганизмов составила: 100% - к тобрамицину, 75% - к канамицину, 50% - к гентамицину и амикацину.

Полученные штаммы P.aeruginosa проявили резистентность к карбенициллину, цефалоспоринам III поколения и тетрациклину, E.coli - к пенициллинам, цефалексину, канамицину и амикацину, а K.ozaennae - только к тестируемым пенициллинам.

Сравнительная оценка антибиотикорезистентности выделенных микроорганизмов показала, что среди некоторых штаммов одних и тех же видов существуют бактерии с одинаковой устойчивостью по всем тестируемым антибиотикам. При дальнейшем изучении их морфологических, культуральных и биохимических свойств также была получена полная идентичность. Это позволяет говорить о том, что внутри исследуемого отделения имеет место циркуляция генетически однородных госпитальных штаммов микроорганизмов, хорошо приспособившихся к условиям данного стационара.

Заключение

Приведенные материалы подтверждают актуальность проблемы внутрибольничной инфекции для оториноларингологии вообще и для данной клиники в частности. Большая скученность в палатах и даже коридорах отделения, высокая текучесть больных вызывают необходимость систематического контроля (не менее одного раза в три недели) за микробным фоном, антибиотикорезистентностью штаммов микроорганизмов, циркулирующих в данном отделении.

Учитывая результаты исследования антибиотикорезистентности полученных госпитальных штаммов, можно говорить о нецелесообразности применения -лактамных антибиотиков для лечения и профилактики осложнений, вызванных нозокомиальной инфекцией в данной клинике. Наименьшая резистентность выделенных нами внутрибольничных штаммов бактерий выявлена к антимикробным препаратам фторхинолонового ряда. Для лечения и профилактики стафилококковых инфекций, по нашим данным, в этом стационаре может быть использован фузидин. Однако в любом случае выбор антибиотика должен основываться на чувствительности микрофлоры, так как в процессе лечения может произойти селекция штаммов, устойчивых к антибактериальным препаратам. Следует осуществлять контроль за тем, чтобы доза антибиотика была адекватной, а концентрация в организме - постоянной. В противном случае возникнут условия для быстрого формирования антибиотикорезистентных штаммов.

Встает также вопрос о необходимости отделять больных с острыми гнойными и хроническими процессами, вызванными, как правило, уже заведомо резистентной флорой, и больных с невоспалительными заболеваниями, особенно перед пластической операцией и в послеоперационном периоде [2, 3, 6].

Кроме того, необходимо придавать большее значение санитарной обработке помещений, мебели дезинфицирующими средствами [2, 3], эффективно действующими в отношении циркулирующих в отделении госпитальных штаммов, с последующим контролем этой санобработки [8]. Возможно также применение очистителей воздуха, которые обладают рядом преимуществ по сравнению с общепринятыми кварцевыми лампами.

Литература:

1. Мамыкина В.М. Внутрибольничная инфекция (эпидемиология и профилактика). Саранск 1990; 6-9.

2. Покровский В.И. Эпидемиология и инфекционные болезни 1996;

2: 4-9.

3. Лунгу В.М. Внутрибольничная инфекция. Кишинев 1991; 8- 39.

4. Красильников А.П., Тимошенко П.А. Внутрибольничная инфекция в оториноларингологии. Съезд оториноларингологов республики Беларусь: 3-й. Минск 1992; 147-150.

5. Яфаев Р.Х., Зуева Л.П. Эпидемиология внутрибольничных инфекций. М 1989; 8-14.

6. Скуя Н.А. Внутрибольничная инфекция, принципы борьбы, профилактики, диагностики и лечения. Рига 1990; 51-55.

7. Wenzel R.P. Nosocomial infections. Baltimore 1987; 13-20.

8. Manual of Clinical Microbiology. 6th edition. Washington 1995; 169- 175.